Lokalna kontrola przepływu krwi

paź 20, 2021
admin

Układ sercowo-naczyniowy ssaków jest serią przewodów ułożonych równolegle i szeregowo. Przepływ krwi przez każdy obwód jest określany przez ciśnienie perfuzyjne i tonus naczynioruchowy w narządzie docelowym. Ogólnie rzecz biorąc, napięcie wazomotoryczne jest regulowane przez lokalne mechanizmy modulowane przez mechanizmy autonomiczne w celu kontroli ciśnienia perfuzyjnego. W tym artykule omówiono autoregulację miogenną i metaboliczną, odpowiedzi pośredniczące i przewodzone przez przepływ oraz rolę krwinek czerwonych w lokalnej kontroli przepływu krwi.

Miejsce lokalnej regulacji przepływu krwi znajduje się na poziomie tętniczek i tętniczek doprowadzających. Jak wykazały systematyczne pomiary mikronakłuć w różnych naczyniach krwionośnych w całym układzie naczyniowym (12), największy spadek ciśnienia występuje między tętniczkami doprowadzającymi a kapilarami (ryc. 1). Oznacza to, że największy opór dla przepływu krwi występuje w tętniczkach. Przepływem krwi przez naczynie rządzą siły fizyczne zgodnie z prawem Poiseuille’a: przepływ krwi = ΔPπr4/8ηl, gdzie ΔP to gradient ciśnienia w naczyniu, r to promień naczynia, η to lepkość, a l to długość naczynia. Ze względu na czwartą potęgę promienia, małe zmiany w średnicy naczynia mogą mieć znaczący wpływ na przepływ krwi. Na przykład, 50% wzrost promienia daje 406% wzrost przepływu krwi, a 50% spadek promienia daje 94% spadek przepływu krwi.

Rys. 1.

Rys. 1.Rozkład mikrociśnienia w całym krążeniu w mięśniu szkieletowym i krezce kota. Wartości są średnimi ± SE; liczby w nawiasach oznaczają liczbę pomiarów. Centralne ciśnienie krwi (BP) jest średnią z wszystkich eksperymentów.

Ważne jest, aby rozpoznać, że wiele typów komórek w ścianie naczyniowej wpływa na ton naczynioruchowy. Zewnętrzna adventitial warstwa składa się z nerwów okołonaczyniowych i macierzy zewnątrzkomórkowej, która zawiera białka , które są teraz odkrywane by zagrać ważną rolę w funkcji mięśni gładkich naczyniowych. Warstwa środkowa zawiera komórki mięśni gładkich naczyń, które są zorientowane prostopadle do światła naczynia (ryc. 2), a więc ustawione w sposób zapewniający siłę obwodową. Wewnętrzna blaszka sprężysta oddziela warstwę mięśni gładkich od śródbłonka. Wewnętrzna warstwa naczynia krwionośnego składa się z komórek śródbłonka zorientowanych wzdłużnie w celu wyczuwania sił ścinających związanych z przepływem krwi (ryc. 3).

Ryc. 2.

Ryc. 2.Obraz konfokalny przekroju podłużnego tętniczki pierwszego rzędu (1A) z mięśnia cremaster. Komórki mięśni gładkich (SMCs) zorganizowane są obwodowo w ścianie naczynia. Drobne włókna widoczne na bocznych granicach są częścią adventitia. Uciśnięta tętniczka była inkubowana z hydrazydem Alexa fluor 633 (czerwony) w celu uwidocznienia macierzy zewnątrzkomórkowej (ECM) i Yo-Pro (jodek propridium, zielony) w celu uwidocznienia SMCs.

Fig. 3.

Fig. 3.Obraz konfokalny przekroju podłużnego tętniczki 1A z mięśnia cremaster. Podłużna orientacja komórek śródbłonka (ECs) w ścianie naczynia kontrastuje z obwodową orientacją SMCs. Drobne włókna widoczne na bocznych granicach są częścią adventitia. Uciśnięta tętniczka była inkubowana z hydrazydem Alexa fluor 633 (czerwony) w celu uwidocznienia ECM i Yo-Pro (jodek propridium, zielony) w celu uwidocznienia ECs i SMCs.

Autoregulacja

Lokalna kontrola przepływu krwi jest ujęta w większości tekstów z zakresu fizjologii pod hasłem autoregulacji przepływu krwi. Termin ten może być używany do opisania zarówno mechanizmów miogennych, jak i metabolicznych, które próbują utrzymać stały przepływ krwi w obliczu nagłych zmian ciśnienia krwi. Diagram na rycinie 4 przedstawia zachowanie autoregulacyjne (18), w którym ostry spadek ciśnienia krwi powoduje początkowe zmniejszenie przepływu (zgodnie z prawem Poiseuille’a), po którym następuje rozkurcz, który przywraca przepływ krwi w kierunku przepływu wyjściowego. Powrót przepływu krwi może być spowodowany przez akumulację metabolitów lub przez mechanizmy miogenne. Podobnie, ostry wzrost ciśnienia krwi wytwarza początkowy wzrost przepływu, po którym następuje zwężenie, które może być spowodowane wypłukaniem metabolitów lub mechanizmami miogennymi.

Fig. 4.

Fig. 4.Schemat autoregulacji przepływu krwi. (+), ciśnienie wyjściowe i przepływ krwi; ○, przepływ bezpośrednio po narzuconej zmianie ciśnienia; ●, stabilne wartości przepływu osiągnięte 1-3 min po podtrzymywanej zmianie ciśnienia.

Miogenna autoregulacja

Typową krzywą miogenną in vitro przedstawiono na ryc. 5. W tej tętniczce nerkowej stopniowany wzrost ciśnienia śródściennego od 25 do 150 mmHg wywołuje stopniowane zmniejszenie średnicy światła naczynia (17). Jest to proces aktywny, niezależny od śródbłonka i nerwów okołonaczyniowych. Gdy Ca2+ jest usuwany z kąpieli, tętniczka biernie się rozszerza, gdy jest poddawana tym samym stopniom ciśnienia. Wazokonstrykcja miogenna obejmuje następującą sekwencję zdarzeń (13):

1. Wzrost ciśnienia śródściennego

2. Depolaryzacja mięśni gładkich wywołana rozciągnięciem

3. Otwarcie napięciowo bramkowanych kanałów Ca2+

4. Globalny wzrost stężenia Ca2+

5. Fosforylacja łańcucha lekkiego miozyny

Fig. 5.

Fig. 5.Krzywa odpowiedzi miogennej. Tętnice międzyżebrowe myszy (n = 9) aktywnie zwężają się na wzrost ciśnienia śródściennego w roztworze soli fizjologicznej zawierającym Ca2+ (PSS) i pasywnie rozszerzają się na wzrost ciśnienia śródściennego w PSS bez Ca2+. Wartości to średnie ± SD. #P < 0,05 vs. 25 mmHg; *P < 0,05 vs. PSS bez Ca2+.

Mechanizm transdukcji wzrostu ciśnienia śródściennego jest tematem intensywnych aktualnych badań. Jedną z możliwości jest aktywacja mechanowrażliwego kanału jonowego w błonie mięśni gładkich. Przykład takiego kanału pokazano na rycinie 6, na której przedstawiono białko tworzące pory, które jest przywiązane do macierzy zewnątrzkomórkowej na zewnątrz komórki i cytoszkieletu wewnątrz komórki. Kiedy siły mechaniczne są przyłożone do macierzy zewnątrzkomórkowej, por jest modyfikowany, umożliwiając napływ Na+ i Ca2+ (10).

Fig. 6.

Fig. 6.Proponowany model mechanosensora naczyniowego. Epitelialny kanał Na+ (ENaC) i/lub białka kanału jonowego wyczuwającego kwas (ASIC) tworzą jonowo-transdukcyjne serce mechanotransduktora. Białka te s± zakotwiczone w ECM i cytoszkielecie przez powi±zane z nimi białka ł±cz±ce, które nie zostały jeszcze zidentyfikowane. Przyłożenie bodźca mechanicznego, takiego jak naprężenie, otwiera aktywność kanału i umożliwia napływ Na+/Ca2+.

Należy zwrócić uwagę na dwa ważne aspekty responsywności miogennej. Pierwszym z nich jest przebieg czasowy odpowiedzi. Jak pokazano na danych z tętniczki mięśnia szkieletowego na ryc. 7, po ostrym wzroście ciśnienia nastąpił mechanicznie indukowany wzrost średnicy. Minęła prawie 1 minuta zanim średnica powróciła do poziomu wyjściowego i kilka minut zanim średnica ustabilizowała się na nowej, mniejszej średnicy (30). Drugim aspektem jest fakt, że wielkość odpowiedzi różni się w tętniczkach pochodzących z różnych narządów (9). Rycina 8 przedstawia porównanie odpowiedzi miogennej mózgu i mięśni szkieletowych. Szczególnie godna uwagi jest dramatyczna różnica w relacji potencjału błonowego i stopnia tonu miogennego w tych dwóch typach naczyń (20).

Fig. 7.

Fig. 7.Odpowiedzi średnicy tętniczek w tętniczkach Cremaster 1A na wzrost ciśnienia śródściennego z 70 do 100 mmHg w czasie 0. Zauważ, że ostry krok ciśnienia spowodował początkowe rozszerzenie tętniczek, po którym nastąpiło zwężenie naczyń do średnicy znacznie mniejszej niż średnica kontrolna. Wartości są średnimi ± SE; n = 7 naczyń. *P < 0.05.

Rys. 8.

Rys. 8.A: porównanie danych z naczyń mózgowych (▴; repotted z Knot et al.) z tętniczkami mięśni szkieletowych (■) pokazujące przesunięcie w górę w relacji ciśnienie-potencjał membranowy (Em) dla tętniczek mięśni szkieletowych z największą różnicą między zestawami danych widoczną przy ciśnieniu poniżej 80 mmHg. B: powyżej tego ciśnienia naczynia mózgowe wykazują mniejsze zwężenie miogeniczne w porównaniu z tętniczkami mięśni szkieletowych. Zauważ, że dla obu zestawów naczyń, aktywne napięcie jest wykreślone w stosunku do pasywnej średnicy przy każdym ciśnieniu. Liczby w nawiasach oznaczają ciśnienia intraluminalne (w mmHg).

Metaboliczna autoregulacja

Przez ponad wiek, dwa różne wyzwania były używane do badania metabolicznej autoregulacji: reaktywna hiperemia i aktywna hiperemia. Reaktywna hiperemia jest odpowiedzią przepływu krwi do okluzji przepływu krwi, podczas gdy aktywna hiperemia jest odpowiedzią przepływu krwi do zwiększonej aktywności metabolicznej tkanki. Przykład hiperemii reaktywnej przedstawiono na rycinie 9. Mankiet ciśnieniowy wokół bicepsa był napełniany do poziomu ponadskurczowego przez różny okres czasu. Po zwolnieniu ucisku z mankietu, mierzono reakcję przepływu krwi w tętnicy ramiennej za pomocą ultradźwiękowej techniki Dopplera. Jak pokazano na Rys. 9, szczytowy wzrost przepływu krwi był związany z czasem trwania okluzji (8). Ta obserwacja jest zgodna z produkcją i akumulacją metabolitów przez niedokrwioną tkankę, chociaż tożsamość kluczowego metabolitu(ów) pozostaje nieznana. Należy jednak zauważyć, że rozszerzenie nie może być przypisane wyłącznie czynnikom metabolicznym, ponieważ może być wytwarzane w izolowanych naczyniach przy braku tkanki miąższowej. Koller i Bagi (19) zaobserwowali, że okluzja izolowanych tętniczek mięśnia gracilis może wywołać zmiany w średnicy, które naśladują reaktywne zachowanie hiperemiczne (ryc. 10). Sugeruje się, że miogenne mechanizmy kontrolne odgrywają dominującą rolę w reaktywnej hiperemii dla okluzji do 30 s (4).

Ryc. 9.

Ryc. 9.Reaktywna hiperemia po zwolnieniu okluzji o różnym czasie trwania w ludzkim przedramieniu (n = 10). Brachial przepływ krwi był mierzony w sposób ciągły z Doppler ultradźwiękami. Niedokrwienie przedramienia było wytwarzane przez napompowanie mankietu ciśnieniowego wokół bicepsa.

Fig. 10.

Fig. 10.Oryginalne zapisy pokazujące zmiany średnicy wyizolowanych tętniczek szczura gracilis w odpowiedzi na zmiany ciśnienia (od 80-10 mmHg do z powrotem do 80 mmHg; ciśnienie) lub na zmiany ciśnienia + przepływu w funkcji 30-, 60-, i 120-s okresów okluzji.

Aktywna hiperemia może być obserwowana w każdej tkance w odpowiedzi na zwiększoną aktywność metaboliczną. Jest to najbardziej widoczna cecha mięśni szkieletowych, w których zmiany aktywności metabolicznej mogą być dramatyczne. Jak pokazano na rycinie 11, stopniowy wzrost aktywności skurczowej wywołany wzrostem prędkości biegu skutkuje stopniowym wzrostem przepływu krwi (21). Pomiary mikrosferyczne przepływu krwi pozwalają na określenie różnic w przepływie krwi pomiędzy różnymi mięśniami, ale to, czego nie można ocenić na podstawie mikrosferycznych pomiarów przepływu krwi, to jak szybko wzrasta przepływ krwi w mięśniach szkieletowych na początku wysiłku. Jak pokazano na Rys. 12, przepływ krwi może wzrosnąć w ciągu pierwszej sekundy po pojedynczym skurczu (6)! Przynajmniej część tego wzrostu można przypisać mechanicznemu uciskowi ściany naczyniowej, który następuje w wyniku wzrostu ciśnienia śródmięśniowego podczas skurczu (7) (ryc. 13). Tak więc czynniki inicjujące wzrost przepływu krwi podczas wysiłku mogą być inne niż czynniki podtrzymujące zwiększony przepływ krwi. Chociaż wiadomo, że istnieje liniowa zależność pomiędzy przepływem krwi a zużyciem O2 (5) (ryc. 14), związek pomiędzy zmianami w zużyciu O2 a zmianami w przepływie krwi pozostaje zagadką. Istnieją co najmniej cztery wymagania, które muszą być spełnione, aby wazodylatator mógł być uznany za odpowiedzialny za wazodylatację metaboliczną:

1. Substancja powinna być produkowana przez tkankę miąższową i dostępna dla naczyń oporowych.

2. Miejscowa aplikacja substancji powinna wywoływać natychmiastowe rozszerzenie naczyń.

3. Śródmiąższowe stężenie substancji powinno być proporcjonalne do wzrostu przepływu krwi.

4. Zahamowanie produkcji substancji lub jej interakcji ze ścianą naczynia powinno zmniejszyć przepływ krwi.

Ryc. 11.

Ryc. 11.Średnie przepływy krwi w mięśniach nóg przed (0 m/min) i podczas ćwiczeń na bieżni przy stopniowo wzrastających prędkościach. GR, gracilis; P, plantaris; S, soleus; GM, gastrocnemius mixed; TA, tibialis anterior; GW, gastrocnemius white.

Fig. 12.

Fig. 12.Odpowiedź przepływu krwi w mięśniach na 1-s tetaniczny skurcz (góra) i na dynamiczne ćwiczenia o łagodnej intensywności (dół). Przepływ krwi mierzono u psów za pomocą wszczepionych sond ultradźwiękowych. Zwróć uwagę na natychmiastowy wzrost po pojedynczym skurczu lub rozpoczęciu dynamicznych ćwiczeń (strzałki).

Fig. 13.

Fig. 13.Odpowiedź pojedynczej tętnicy doprowadzającej szczura soleus na ciśnienie zewnętrzne. 1 × 1, jeden impuls ciśnienia o czasie trwania 1-s; 1 × 5, jeden impuls ciśnienia o czasie trwania 5-s; 5 × 1, pięć oddzielnych impulsów o czasie trwania 1-s z przerwą 1 s między każdym impulsem.

Fig. 14.

Fig. 14.Przepływ krwi jako funkcja zużycia O2 w mięśniach soleus i gracilis. Obliczone linie regresji to y = -0,95 + 7,0x (r = 0,98, P < 0,001) dla mięśnia podeszwowego i y = -3,3 + 11,4x (r = 0,87, P < 0,001) dla mięśnia gracilis. Każdy punkt reprezentuje jedno zwierzę, z wyjątkiem tych w nawiasach, które są średnimi wartościami kontrolnymi dla wszystkich zwierząt w tej grupie.

Istnieje istna lista substancji, które zostały zbadane (6). Jedną z nich, dla której istnieją najsilniejsze dowody, jest K+. Podczas skurczu mięśnia, K+ szybko dyfunduje z włókna mięśniowego przez zależne od napięcia kanały K+, co skutkuje podwyższonym stężeniem K+ w płynie śródmiąższowym otaczającym naczynia krwionośne (ryc. 15) (14). Szybki wzrost stężenia K+ sprawia, że jon ten jest jedynym dotychczas zbadanym wazodylatatorem pochodzącym z mięśni, który mógłby potencjalnie wyjaśnić początkową odpowiedź przepływu krwi na skurcz. Tętniczki mięśni szkieletowych wykazują zależne od dawki rozszerzenie w fizjologicznym zakresie stężeń K+ obserwowanych w śródmiąższu mięśnia (ryc. 16) (23). Co najważniejsze, ostatnie dowody wykazały, że hamowanie uwalniania K+ z mięśni szkieletowych łagodzi obserwowane rozszerzenie we wczesnym okresie skurczu (ryc. 17) (1).

Rys. 15.

Rys. 15.Zmiany zewnątrzkomórkowego stężenia K+ w mięśniu brzuchatym łydki kota wywołane izometrycznymi skurczami tężcowymi trwającymi 1, 5, 10 i 20 s.

Fig. 16.

Fig. 16.Odpowiedzi wazodylatacyjne na skumulowaną ekspozycję na KCl zarówno w tętniczkach 1A, jak i trzeciego rzędu (3A) mięśnia brzuchatego łydki szczura. Wartości to średnie ± SE.

Rys. 17.

Rys. 17.Wpływ 3 × 10-4 M 3,4-diaminopirydyny (DAP; antagonista napięciowego kanału K+) na zmianę średnicy w czasie 4 s we wszystkich badanych częstotliwościach bodźców. *Kontrolna zmiana średnicy była znacząco różna (P < 0,01) od średnicy w obecności DAP.

Flow-Mediated Responses

Już w 1933 roku wykazano, że infuzja środków rozszerzających naczynia krwionośne może spowodować rozszerzenie naczyń krwionośnych w części naczynia krwionośnego, która nie była narażona na działanie środka rozszerzającego (24). Późniejsze badania wykazały, że wzrost naprężeń ścinających spowodowany wzrostem przepływu krwi jest odczuwany przez komórki śródbłonka, które powodują rozszerzenie naczyń poprzez uwalnianie rozpuszczalnych mediatorów do przylegających komórek mięśni gładkich (ryc. 18). Wielkość dylatacji wywołanej przepływem jest różna w naczyniach różnych narządów i różnej wielkości. Rycina 19 pokazuje większe rozszerzenie w tętniczkach 1A z mięśnia brzuchatego łydki niż w tętniczkach 1A z mięśnia podeszwowego (27). Nie wiadomo, czy obserwowana różnica w wielkości dylatacji indukowanej przepływem wynika z odmiennych profili metabolicznych tych dwóch grup mięśni. Na rycinie 19 przedstawiono również przebieg czasowy dylatacji wywołanej zwiększonym przepływem. Spowolniona odpowiedź jest szczególnie widoczna w tętniczkach mięśnia podeszwowego, gdzie minimalne rozszerzenie obserwowano po 30 s od rozpoczęcia podwyższonego przepływu. Powolny przebieg czasowy odpowiedzi jest również łatwo obserwowany w tętnicach przewodowych u ludzi (ryc. 20) (22). Po zwolnieniu okluzji przedramienia (downstream), naprężenie ścinające (głównie funkcja prędkości krwi) osiąga wczesny szczyt z wolniej rozwijającym się szczytem średnicy, który jest opóźniony o ∼ 40 s. Warto również zauważyć, że wielkość rozszerzenia wynosi ∼6% w porównaniu z 30-60% w tętniczkach mięśni szkieletowych (ryc. 19), podkreślając w ten sposób wpływ wielkości naczynia na wielkość rozszerzenia spowodowanego przepływem.

Ryc. 18.

Ryc. 18.Mechanizm rozszerzenia naczyń spowodowanego przepływem. Siła ścinająca działająca na ECs uwalnia tlenek azotu (NO), prostacyklinę i EDHF, które powodują relaksację mięśni gładkich naczyń. NOS, syntaza NO; PLA2, fosfolipaza A2; COX, cyklooksygenaza; PGIS, syntaza prostacykliny; P450, cytochrom P-450; AC, cyklaza adenylowa.

Fig. 19.

Fig. 19.Przebieg czasowy indukowanego przepływem rozszerzenia dla tętniczek 1A mięśnia podeszwowego i brzuchatego szczura. Średnica zwiększyła się istotnie w czasie (P < 0,01) w tętniczkach z obu mięśni, ale stopień rozszerzenia był znacznie większy w tętniczkach mięśnia brzuchatego (P < 0,05).

Fig. 20.

Fig. 20.Średnia zmiana w bodźcu prędkości ścinania i odpowiedzi rozszerzenia tętnicy ramiennej w czasie. Linia ciągła, średnia bodźca szybkości ścinania przez ośmiu uczestników; linia przerywana, średnia linia najlepszego dopasowania średnic mierzonych w dyskretnych punktach czasowych przez ośmiu uczestników.

Prowadzone odpowiedzi

Prowadzone odpowiedzi naczynioruchowe (znane również jako propagowane odpowiedzi) koordynują dystrybucję przepływu krwi w obrębie sieci naczyniowych. Chociaż elektrotoniczne rozprzestrzenianie się sygnałów przez połączenia szczelinowe wydaje się być głównym trybem sygnalizacji wzdłuż ściany naczynia, to może nie być jedyny tryb. Doświadczalnie, zasada ta jest demonstrowana przez mikroiniekcję lub mikrojonoforezę substancji chemicznej w małych ilościach w dyskretnym punkcie na ścianie naczynia i obserwowanie średnicy naczynia w innym miejscu w kierunku do góry (25). Zarówno wazodylatacja, jak i wazokonstrykcja mogą być prowadzone wzdłuż ściany naczynia. Rycina 21 pokazuje, że podanie acetylocholiny na ścianę naczynia inicjuje hiperpolaryzację zarówno komórek śródbłonka, jak i komórek mięśni gładkich, prowadząc do lokalnego rozszerzenia. Oprócz rozszerzenia w miejscu przewodzenia w odległości 530 μm, hiperpolaryzację obserwowano zarówno w komórkach śródbłonka, jak i w komórkach mięśni gładkich. Podanie noradrenaliny do ściany naczynia (ryc. 22) inicjowało depolaryzację mięśniówki gładkiej, przy braku zmian potencjału błonowego w komórkach śródbłonka zarówno w miejscu lokalnym, jak i w miejscu przewodzenia. Tak więc, te eksperymenty wskazują, że sygnał dla przewodzonych odpowiedzi może być przewodzony wzdłuż komórek śródbłonka, wzdłuż komórek mięśni gładkich lub obu (29).

Fig. 21.

Fig. 21.Reprezentatywne tracings of Em i średnica w odpowiedzi na mikrojonoforezę acetylocholiny (strzałki) w tętniczkach woreczka policzkowego chomika. Nagrania SMC i EC uzyskano w miejscu stymulacji (local) i 530 μm od bodźca (conducted).

Fig. 22.

Fig. 22.Reprezentatywne tracings of Em and diameter in response to norepinephrine microiontophoresis (arrows) in hamster cheek pouch arterioles. Nagrania SMC i EC uzyskano w miejscu stymulacji (lokalne) i 530 μm od bodźca (prowadzone). Zwróć uwagę, że noradrenalina depolaryzowała SMCs, ale nie miała wpływu na Em ECs.

Czy odpowiedzi przewodzone są jedynie ciekawostką laboratoryjną? Ocena funkcjonalnego znaczenia tego mechanizmu wymaga wykazania, że zniesienie przewodzonych odpowiedzi upośledza normalną odpowiedź przepływu krwi na jakieś fizjologiczne wyzwanie. Eksperymenty przeprowadzone w dwóch laboratoriach wykazały, że odpowiedzi przewodzone są niezbędne dla pełnej ekspresji aktywnej hiperemii. Blokada odpowiedzi przewodzonych przez wysoko osmolarną sacharozę (2) lub uszkodzenie komórek śródbłonka barwnikiem świetlnym (26) (ryc. 23) praktycznie zniosła zmiany średnicy na skurcz mięśnia. Te wyniki pokazują funkcjonalne znaczenie przewodzonej wazodylatacji.

Fig. 23.

Fig. 23.Effect of light dye damage of ECs on ascending vasodilatation and exercise hyperemia in hamster retractor feed arteries. Średnica naczynia i przepływ krwi zostały określone w proksymalnym miejscu w warunkach spoczynku (Rest) i natychmiast po zaprzestaniu skurczów (Peak). A: uszkodzenie światłem barwnika znosiło wstępujące rozszerzenie naczyń bez zmian w średnicy spoczynkowej. B: odpowiedź hiperemiczna na skurcze mięśnia była zmniejszona o połowę po utracie wstępującej wazodylatacji. *P < 0,01, Peak vs. Rest; +P ≤ 0,001, Post vs. Pre; ++P < 0,02, Post vs. Pre.

Czerwone krwinki

Intrygującą hipotezą wysuniętą w ostatnich latach jest to, że czerwone krwinki, na mocy uwalniania substancji rozszerzającej naczynia krwionośne podczas deoksygenacji, mogłyby regulować swoją własną dystrybucję. To teoretycznie modulowałoby perfuzję mikronaczyniową w odpowiedzi na czasowe zmiany w metabolicznym zapotrzebowaniu. Jedną z substancji, której uwalnianie jest skorelowane z desaturacją hemoglobiny, jest ATP. Bergfeld i Forrester (3) po raz pierwszy wykazali, że ATP jest uwalniany z ludzkich erytrocytów w odpowiedzi na krótką ekspozycję na hipoksję. Fakt, że wzrost ATP był ściślej skorelowany z procentem zredukowanej hemoglobiny niż z Po2 sugerował, że uwalnianie ATP może być związane z cząsteczką hemoglobiny (ryc. 24) (15). Model opisany przez Ellswortha i wsp. (11) jest przedstawiony obrazowo na rycinie 25. Odtlenienie powoduje uwolnienie ATP z krwinki czerwonej poprzez proces związany z białkami G, cyklazą adenylową i CFTR. ATP działa na receptory P2Y na śródbłonku, które uwalniają drugi komunikator powodujący relaksację mięśni gładkich. Analogiczny paradygmat został ogłoszony dla tlenku azotu (NO) przez Stamlera i współpracowników (28). NO związany z hemoglobiną jako nitrosohemoglobina jest uwalniany podczas deoksygenacji. Powoduje to rozszerzenie naczyń krwionośnych poprzez bezpośrednią aktywację cyklazy guanylowej w komórkach mięśni gładkich. Tak więc w miejscową kontrolę przepływu krwi mogą być zaangażowane substancje (ATP lub NO) uwalniane przez krwinki czerwone. Chociaż nie dostarczono ostatecznych dowodów, mechanizm ten może przyczyniać się do metabolicznej autoregulacji.

Fig. 24.

Fig. 24.Top: analiza korelacji między stężeniem ATP w osoczu a desaturacją hemoglobiny (rHb) w krwi szczurów narażonych ex vivo na hipoksyjne mieszaniny gazów. Analiza została przeprowadzona na każdym indywidualnym eksperymencie, a następnie uśredniona w celu uwzględnienia zmienności między zwierzętami z wynikowym r2 równym 0,88. Porównaj to z wynikami pokazanymi na dole, gdzie ta sama analiza została przeprowadzona z użyciem Po2 jako rzędnej (r2 = 0,54).

Rys. 25.

Rys. 25.Wniknięcie erytrocytów w rejony tkanek o wysokim zapotrzebowaniu na O2 (obniżone Po2) powoduje dyfuzję O2 do tkanki i spadek wysycenia O2 (So2) Hb w obrębie erytrocytów w mikrokrążeniu. Ten spadek So2 stymuluje uwalnianie ATP z erytrocytu, przy czym ilość uwalnianego ATP jest proporcjonalna do spadku So2. Pochodzący z erytrocytów ATP może następnie oddziaływać ze śródbłonkowymi receptorami purynergicznymi, powodując wytwarzanie mediatorów inicjujących wazodylatację. Ta wazodylatacja może być prowadzona w górę rzeki, powodując zwiększenie przepływu krwi (dostarczanie O2) do obszarów o zwiększonym zapotrzebowaniu na O2. PR, receptory purynergiczne; Gi, heterotrimeic G protein; (+), stymulacja; Endo, śródbłonek.

Wszystkie te lokalne mechanizmy kontrolne są zintegrowane w celu zapewnienia odpowiedniego przepływu krwi, aby zaspokoić potrzeby tkanek. Jak podkreślają Jasperse i Laughlin (16), względne znaczenie każdego z nich zmienia się wzdłuż drzewa naczyniowego. Zasada ta została schematycznie przedstawiona na rycinie 26. Na przykład, odpowiedzi miogenne i metaboliczne są największe w najmniejszych tętniczkach, podczas gdy dylatacja wspomagana przepływem jest ważniejsza w większych niż mniejszych tętniczkach. Jak wskazano wcześniej, należy również pamiętać, że te lokalne mechanizmy kontroli różnią się w odniesieniu do przebiegu czasowego i między tkankami.

Fig. 26.

Fig. 26.Względna reaktywność każdej sekcji drzewa tętniczego (góra) dla autoregulacji miogennej, rozszerzenia indukowanego przepływem, rozszerzenia metabolicznego i zwężenia współczulnego.

Podsumowanie

Lokalna średnica tętniczek wpływa na organiczny przepływ krwi i systemowe ciśnienie krwi. Wszystkie typy komórek w ścianie naczynia krwionośnego mogą wpływać na średnicę naczynia. Wpływ lokalnych mechanizmów kontrolnych (w tym miogennych, metabolicznych, pośredniczących w przepływie i przewodzonych odpowiedzi) zmienia się w czasie, od tkanki do tkanki i między generacjami naczyń.

Nie zgłoszono konfliktu interesów, finansowego ani innego, przez autora(ów).

ACKNOWLEDGMENTS

Autor z wdzięcznością dziękuje dr Jeffreyowi Jasperse za wprowadzenie go do świata mikrokrążenia oraz dr Michaelowi Hillowi i dr Michaelowi Davisowi za ciągłe instrukcje i cenne dyskusje na ten temat.

  • 1. Armstrong ML , Dua AK , Murrant CL. Potas inicjuje wazodylatację indukowaną przez pojedynczy skurcz mięśnia szkieletowego w mięśniu cremaster chomika. J Physiol 581: 841-852, 2007.
    Crossref | PubMed | ISI | Google Scholar
  • 2. Berg BR , Cohen KD , Sarelius IH. Bezpośrednie sprzężenie między przepływem krwi a metabolizmem na poziomie kapilarnym w mięśniach prążkowanych. Am J Physiol Heart Circ Physiol 268: H1215-H1222, 1995.
    Link | Google Scholar
  • 3. Bergfeld GR , Forrester T. Uwalnianie ATP z ludzkich erytrocytów w odpowiedzi na krótki okres hipoksji i hiperkapnii. Cardiovasc Res 26: 40-47, 1992.
    Crossref | PubMed | ISI | Google Scholar
  • 4. Bjornberg J , Albert U , Mellander S. Odpowiedzi oporu w proksymalnych naczyniach tętniczych, tętniczkach i żyłach podczas reaktywnego niedotlenienia w mięśniu szkieletowym i ich podstawowe mechanizmy regulacyjne. Acta Physiol Scand 139: 535-550, 1990.
    Crossref | PubMed | Google Scholar
  • 5. Bockman EL. Przepływ krwi i zużycie tlenu w aktywnych mięśniach soleus i gracilis u kotów. Am J Physiol Heart Circ Physiol 244: H546-H551, 1983.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 6. Clifford PS , Hellsten Y. Vasodilatory mechanisms in contracting skeletal muscle. J Appl Physiol 97:393-403, 2004.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 7. Clifford PS , Kluess HA , Hamann JJ , Buckwalter JB , Jasperse JL. Mechanical compression elicits vasodilatation in rat skeletal muscle feed arteries. J Physiol 572:561-567, 2006.
    Crossref | PubMed | ISI | Google Scholar
  • 8. Clifford PS , Jasperse JL , Shoemaker JK. Pozycja kończyny wpływa na wielkość reaktywnej hiperemii. FASEB J 24: 804.12, 2010.
    ISI | Google Scholar
  • 9. Davis MJ. Gradient odpowiedzi miogenicznej w sieci tętniczek. Am J Physiol Heart Circ Physiol 264: H2168-H2179, 1993.
    Link | Google Scholar
  • 10. Drummond HA , Grifoni SC , Jernigan NL. Nowa sztuczka dla starego dogmatu: Białka ENaC jako mechanotransduktory w mięśniach gładkich naczyń krwionośnych. Physiology 23: 23-31, 2008.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 11. Ellsworth ML , Ellis CG , Goldman D , Stephenson AH , Dietrich HH , Sprague RS. Erytrocyty: czujniki tlenu i modulatory tonu naczyniowego. Physiology 24: 107-116, 2009.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 12. Fronek K , Zweifach BW. Mikronaczyniowy rozkład ciśnienia w mięśniach szkieletowych i efekt wazodilatacji. Am J Physiol 228: 791-796, 1975.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 13. Hill MA , Davis MJ. Sprzężenie zmiany ciśnienia intraluminalnego z depolaryzacją mięśni gładkich naczyń: wciąż rozciąganie dla wyjaśnienia. Am J Physiol Heart Circ Physiol 292: H2570-H2672, 2007.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 14. Hnik P , Holas M , Krekule I , Kriz N , Mejsnar J , Smiesko V , Ujec E , Vyskocil F. Work-induced potassium changes in skeletal muscle and effluent venous blood assessed by liquid ion-exchanger microelectrodes. Pflügers Arch 362: 85-94, 1976.
    Crossref | ISI | Google Scholar
  • 15. Jagger JE , Bateman RM , Ellsworth ML , Ellis CG. Rola erytrocytu w regulacji lokalnego dostarczania O2 pośredniczonego przez utlenowanie hemoglobiny. Am J Physiol Heart Circ Physiol 280: H2833-H2839, 2001.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 16. Jasperse JL , Laughlin MH. Ćwiczenie i krążenie mięśni szkieletowych. In: Badania mikronaczyniowe: Biology and Pathology, edited by , Shepro D. New York: Elsevier Academic, 2006.
    Google Scholar
  • 17. Jernigan NL , Drummond HA. Naczyniowe białka ENaC są wymagane do zwężenia miogennego nerek. Am J Physiol Renal Physiol 289: F891-F901, 2005.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 18. Jones RD , Berne RM. Wewnętrzna regulacja przepływu krwi w mięśniach szkieletowych. Circ Res 14: 126-138, 1964.
    Crossref | ISI | Google Scholar
  • 19. Koller A , Bagi Z. On the role of mechanosensitive mechanisms eliciting reactive hyperemia. Am J Physiol Heart Circ Physiol 283: H2250-H2259, 2002.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 20. Kotecha N , Hill MA. Myogenic contraction in rat skeletal muscle arterioles: smooth muscle membrane potential and Ca2+ signaling. Am J Physiol Heart Circ Physiol 289: H1326-H1334, 2005.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 21. Laughlin MH , Armstrong RB. Wzorce dystrybucji przepływu krwi w mięśniach jako funkcja prędkości biegu u szczurów. Am J Physiol Heart Circ Physiol 243: H296-H306, 1982.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 22. Pyke KE , Dwyer EM , Tschakovsky ME. Wpływ kontrolowania szybkości ścinania na odpowiedzi dylatacyjne wywołane przepływem w tętnicy ramiennej u ludzi. J Appl Physiol 97: 499-508, 2004.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 23. Roseguini BT , Davis MJ , Laughlin MH. Rapid vasodilation in isolated skeletal muscle arterioles: impact of branch order. Microcirculation 17: 83-93, 2010.
    Crossref | PubMed | ISI | Google Scholar
  • 24. Schretzenmayr A. Uber kreislaufregulatorische vorgange an den grossen arterien bei der muskelarbeit. Arch Ges Physiol 232: 743, 1933.
    Crossref | Google Scholar
  • 25. Segal SS , Duling BR. Propagacja wazodilatacji w naczyniach oporowych chomika: rozwój i przegląd hipotezy roboczej. Circ Res 61, Suppl II: 20-25, 1987.
    ISI | Google Scholar
  • 26. Segal SS , Jacobs TL. Rola dla przewodnictwa komórek śródbłonka w rozszerzeniu naczyń wstępujących i przekrwieniu wysiłkowym w mięśniu szkieletowym chomika. J Physiol 536: 937-946, 2001.
    Crossref | ISI | Google Scholar
  • 27. Shipley RD , Kim SJ , Muller-Delp JM. Time couse of flow-induced vasodilation in skeletal muscle: contributions of dilator and constrictor mechanisms. Am J Physiol Heart Circ Physiol 288: H1499-H1507, 2005.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 28. Stamler JS , Jia L , Eu JP , McMahon TJ , Demchenko IT , Bonzventura J , Gernert K , Piantadosi CA. Blood flow regulation by S-nitrosohemoglobin in the physiological oxygen gradient. Science 276: 2034-2037, 1997.
    Crossref | PubMed | ISI | Google Scholar
  • 29. Welsh DG , Segal SS. Przewodnictwo komórek śródbłonka i mięśni gładkich w tętniczkach kontrolujących przepływ krwi. Am J Physiol Heart Circ Physiol 274: H178-H186, 1998.
    Link | ISI | Google Scholar
  • 30. Zou H , Ratz PH , Hill MA. Role of myosin phosphorylation and i in myogenic reactivity and arteriolar tone. Am J Physiol Heart Circ Physiol 269: H1590-H1596, 1995.
    Link | ISI | Google Scholar

.

Dodaj komentarz

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany.